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un luminomètre et est rapporté comme des unités relatives de lumière (RLU). L'AE
inactif n'émet pas de lumière pendant le processus de détection.
5. Le système distribue Auto Detect 1 et Auto Detect 2 dans la MTU. Auto Detect 1 et
Auto Detect 2 réagissent avec la molécule d'AE, émettant un photon, ou un signal
lumineux.
6. Un luminomètre lit le signal lumineux, si présent.
7. Une fois que le luminomètre a lu le signal de la molécule d'AE, la MTU se déplace vers
la file d'attente de sortie. Le système injecte de l'hypochlorite de sodium et du tampon
de désactivation dans la MTU pour détruire tout amplicon présent. La MTU reste dans
la file d'attente pendant 15 minutes pour être décontaminée. Le système aspire ensuite
les liquides dans un récipient pour déchets liquides et dépose les MTU, les embouts
de pipette et les embouts MTU dans un récipient à déchets solides.
Double test cinétique (Dual Kinetic Assay, DKA)
Les tests APTIMA peuvent également utiliser la technologie du double test cinétique
(Dual Kinetic Assay, DKA) pour activer la détection multiplex à partir d'un seul échantillon.
Dans le test DKA, les différences entre les profils cinétiques des sondes marquées
permettent la différenciation du signal ; les profils cinétiques sont dérivés des mesures de
l'émission de photons pendant l'intervalle de lecture lors de la détection. Lorsque la
réaction de détection chimiluminescente du signal comporte des cinétiques très rapides,
elle est désignée comme une cinétique de type « signal éclair ». Lorsque la réaction de
détection chimiluminescente du signal est relativement plus lente, elle est désignée
comme une cinétique de type « signal brillant ».
Tests en temps réel
La technologie des tests en temps réel utilise les processus de la cible de capture et de
l'amplification médiée par la transcription. Une fois que le réactif enzymatique est ajouté,
le progrès de l'amplification est surveillé en continu à l'aide de la détection par
fluorescence. Plusieurs acides nucléiques cibles peuvent être surveillés et identifiés
spécifiquement, sur la base de la longueur d'onde de la molécule fluorescente. Le réactif
d'amplification contient des oligonucléotides avec des marqueurs fluorescents
(fluorophores) dont les deux extrémités s'hybrident ensemble (boucle en épingle à
cheveux). Une extrémité comporte le marqueur fluorescent et l'autre extrémité comporte
une molécule d'extinction (quencher). Lorsque les deux extrémités se trouvent en
proximité étroite l'une de l'autre, la molécule quencher empêche la libération de la
lumière fluorescente. Pendant l'amplification, à mesure que l'amplicon est produit, le
fluorophore s'hybride à l'amplicon. Lorsque le fluorophore est hybridé, le quencher ne se
trouve plus à côté de la molécule fluorescente, permettant ainsi l'émission de la lumière
fluorescente. À mesure que l'amplification continue, la quantité de fluorophore lié atteint
le seuil de détection du détecteur de fluorescence.
Manuel de l'opérateur du Panther® / Panther Fusion® System
AW-20220-901 Rév. 001 (FR)
Vue d'ensemble
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