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陰性對照是無菌增殖培養液 （如 Demi-Fraser 培養液） ， 未在檢測盒中提供 。 請勿將水用作陰性對照 。
安全
使用者應該閱讀 、 理解並遵循 3M 分子檢測系統和 3M 分子檢測套組 2 - 單增李斯特菌 說明中的所有安全資訊 。 請保留安全操作
指引以便將來作參考之用 。
警告 ： 顯示危險情形 ， 如果沒有避免的話 ， 會導致死亡或嚴重的身體傷害及/或財產的損害 。
小心 ： 顯示危險情形 ， 如果沒有避免的話 ， 會導致輕微或中度的身體傷害及/或財產的損害 。
注意 ： 顯示可能危險情形 ， 如果沒有避免的話 ， 可能導致財產損失 。
請勿在人類或動物的各種診斷中使用 3M 分子檢測套組 2 - 單增李斯特菌 。
3M 分子檢測套組 2 - 單增李斯特菌 方法可生成 單增李斯特菌 ， 若暴露其中 ， 其數量足以導致死產和孕婦死亡及免疫系統受損 。
使用者必須就目前適用的檢測技術對其人員進行訓練 ： 例如 ， 優良實驗室規範 ISO/IEC 17025
為了降低與假陰性結果關聯的風險 ， 避免釋放出污染產品︰
• 遵循並按照產品說明書中所述執行測試 。
• 請按照包裝和產品說明書中的指示儲存 3M 分子檢測套組 2 - 單增李斯特菌 。
• 始終在過期日期之前使用 3M 分子檢測套組 2 - 單增李斯特菌 。
• 將 3M 分子檢測套組 2 - 單增李斯特菌 用於經由內部或第三方公證單位驗證的食品和環境樣本 。
• 僅將 3M 分子檢測套組 2 - 單增李斯特菌 用於經由內部或第三方公證單位驗證的表面 、 消毒清潔劑 、 方法和菌種 。
• 對於包含帶芳基磺酸酯複合物的中和緩衝液的環境樣本 ， 請在檢測前進行 1:2 的稀釋 （1 份樣本配 1 份無菌增殖培養液） 。 另
一個方法是將 10 μL 的 NB 增殖轉移到 LS 管中 。 3M™ 樣本處理產品 ， 其中包含帶芳基磺酸酯複合物的中和緩衝液 ： BPPFV1
0NB 、 RS96010NB 、 RS9604NB 、 SSL10NB 、 XSLSSL10NB 、 HS10NB 和 HS119510NB 。
為了減少與化學品和生物危害曝露相關聯的風險 ， 請注意以下事項 ：
• 女性實驗人員必須瞭解或被告知若暴露於 單增李斯特菌會導致母親因感染而造成死胎的風險 。
• 在受過訓練人員的監控下 ， 在配備完善的實驗室中執行病原體測試 。
• 始終遵循標準實驗室安全規範 ， 包括在處理試劑和污染的樣本時穿戴合適的保護服裝和眼罩 。
• 擴增放大後避免接觸增殖培養液和試劑試管的內容物 。
• 根據當前業界標準丟棄增殖後的樣本 。
• 未在溶菌步驟中經過適當熱處理的樣本可以被視為潛在的生物危害 ， 不應將其插入 3M 分子檢測設備 。
為了在準備套組時降低與交叉污染相關聯的風險 ， 請注意以下事項 ：
• 始終戴手套 （保護使用者和防止核酸酵素污染） 。
為了減少汙染環境相關風險 ， 請注意以下事項 ：
• 請遵循業界的汙染廢物棄置標準 。
• 不要超出建議的溫度設定 。
• 不要超出建議的加熱時間 。
• 使用正確的 、 經過校準的溫度計檢驗 3M™ 分子檢測加熱塊植入溫度 （如局浸溫度計或熱電偶數字溫度計 ， 而非全浸溫度計） 。
溫度計必須置於 3M 分子檢測加熱塊植入溫度裡指定的位置 。
為了在準備套組時降低與交叉污染相關聯的風險 ， 請注意以下事項 ：
• 建議使用無菌噴霧屏障 （已過濾） 分子生物級滴管針 。
• 每次轉移樣本時使用新的滴管針 。
• 採用優良實驗室規範將樣本從增殖培養液轉移至溶菌試管 。 為了避免滴管污染 ， 使用者可以選擇增加一個中間轉移步驟 。 例
如 ， 使用者可以將每種經過增殖的樣本轉移至無菌試管中 。
• 在適用的地方使用包含殺菌燈的分子生物操作台 。
• 使用 1-5% （與水的比例為 v:v） 家用漂白劑溶液或 DNA 去除溶液 ， 定期淨化實驗室工作台和設備 （微量吸管 、 上蓋/開蓋工具
等） 。
為了降低假陽性的風險 ， 請注意以下事項 ：
• 擴增放大後切勿打開試管 。
• 處理污染的試管時始終將其在濃度為 1-5% （與水的比例為 v:v） 家用漂白溶液中浸泡 1 個小時 ， 且始終遠離套組準備區 。
相關資訊和當地處理法規 ， 請查閱安全資料表 。
如果您對於特定的應用或程序存有疑問 ， 請瀏覽我們的網站 www.3M.com/foodsafety ， 或聯絡您當地的 3M 代表或經銷商 。
W 警告
小心
注意事項
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（繁體中文）
ZH
或 ISO 7218
。
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