Beckman Coulter MicroScan B1016-138 Manuel D'utilisation page 99

DAPTOMYCIN
Daptomycin inkluderer CLSI-anbefalt kalsiumsupplement. Ingen tilleggssupplement er nødvendig.
PROSEDYREBEGRENSNINGER
1. MicroScan gram-positive paneler bør ikke brukes til å påvise følsomhetene til streptokokker bortsett fra S. agalactiae
(gruppe B) og S. bovis-gruppen. Disse isolatene bør testes med en akseptert metode, f.eks. MicroScan MICroSTREP
plus-panelet.
2. CLSI anbefaler at Mueller Hinton-buljong tilsettes lysert hesteblod ved testing av kresne streptokokker (CLSI-dokument
M07) og L. monocytogenes (CLSI-dokument M45).
fra denne anbefalingen. Hvis det er utilstrekkelig vekst i vekstbrønnen, er ikke MIC-resultatene fra S. agalactiae (gruppe
B), S. bovis-gruppen og L. monocytogenes gyldige og en annen metode bør benyttes.
3. MicroScan tørket gram-positivt panel kan brukes til å identifisere kresne streptokokker. Hvis det er utilstrekkelig vekst i
vekstbrønnen, er ikke de biokjemiske resultatene gyldige, og en annen metode bør benyttes.
4. Anaerobe bakterier – positive kombipaneler / positive MIC-paneler er ikke egnet for testing av anaerobe gram-positive
kokker.
5. Flere tester kan være nødvendige for å bestemme den endelige identifiseringen når det oppnås en identifisering med
lav sannsynlighet (< 85 %): Se Microbiologics Manual (Håndbok for mikrobiologi).
6. Penicillin-MIC for koagulasenegative stafylokokker er kanskje ikke nyttige i estimatet av resistens på grunn av
β-laktamase. Derfor bør en β-laktamase-test utføres for å bekrefte MIC. Stammer av S. saprophyticus med
penicillin-MIC på 1–2 µg/mL har vist seg å ikke produsere β-laktamase, og dermed kan ampicillin, amoksicillin eller
penicillin være det egnede legemiddelet for urinveisinfeksjoner med disse organismene.
7. Lettere uklarhet kan forekomme i tilfeldige brønner med noen antimikrobielle midler på grunn av den ufullstendige
løseligheten for enkelte mediebestanddeler. Dette skal ikke tolkes som vekst.
8. Tolkningen av testresultater krever faglært klinisk personale som bør bruke sin dømmekraft og kompetanse, samt
ytterligere bekreftende tester når det er nødvendig, før de aksepterer identifiseringen av en organisme.
9. Biotypenumre bør ikke brukes til identifisering av fenotype for stammer isolert fra forskjellige prøver for samme pasient.
10. Resultater oppnådd med kombinasjonene av organisme og antimikrobielt middel oppgitt nedenfor, har vist avvik i MIC
sammenlignet med resultatene med natten over-metoden. Hvis det antimikrobielle middelet er kritisk for pasientens
behandling, bør en annen prosedyre brukes, eller det antimikrobielle middelet bør ikke rapporteres på grunn av lav
korrelasjon.
Organisme
S. pneumoniae
Andre
Viridans-streptokokker enn
S. bovis-gruppen
Andre beta-hemolytiske
streptokokker enn S.
agalactiae
(gruppe B)
Alle streptokokker
Enterokokker
E. faecium
C29870–AD
Legemidler der, hvis
de er avgjørende for
pasientens behandling,
en annen metode bør
benyttes
Meropenem 2
Prosedyren for MicroScan tørket gram-positivt panel er forskjellig
1,36
Legemidler som ikke blir rapportert
alle
alle
alle
Arbekacin
Azitromycin
Ceftarolin
Klaritromycin
Klindamycin (kun EUCAST)
Gentamycin
Nitrofurantoin
Penicillin (kun EUCAST)
Arbekacin
Azitromycin
Ceftarolin
Klaritromycin
Imipenem
99 of 339
1