Hologic ThinPrep 5000 Manuel De L'opérateur page 246

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OLORATION ET MONTAGE
SECTION
C
DIRECTIVES DE COLORATION RECOMMANDÉES
Les durées de coloration sont différentes pour les lames préparées avec ThinPrep par comparaison
avec les préparations conventionnelles et doivent être ajustées en conséquence.
• Utiliser des concentrations d'alcool calibrées (50 % ou 70 %) pour réduire le risque de choc
osmotique ou de dégradation des cellules pendant la coloration.
• L'utilisation de solutions bleuissantes légères et de bains d'acide dilué optimise la coloration
nucléaire et réduit au maximum le risque de dégradation des cellules. Hologic recommande
d'utiliser une solution de carbonate de lithium diluée ou une solution d'hydroxyde
d'ammonium comme solution bleuissante.
• Éviter d'employer des solutions concentrées à base de sels comme Scotts Tap Water Substitute.
• Les bains doivent complètement recouvrir les lames afin de réduire le risque de dégradation
des cellules pendant la coloration.
• Pour des résultats optimaux, les lames doivent être agitées en les plongeant au moins 10 fois
dans chaque bain.
Les concentrations maximales à utiliser pour les solutions suivantes lors du processus de coloration
sont précisées ci-dessous :
Acide chlorhydrique (HCl) 0,025 %
Bains (bleuissants) de carbonate de lithium 10 mg par litre
Acide acétique 0,1 %
Hydroxyde d'ammonium 0,1 %
Pour les lames gynécologiques devant être utilisées avec le système d'imagerie ThinPrep, consulter
les protocoles de coloration recommandés indiqués dans le manuel de l'utilisateur du colorant
ThinPrep.
1. Se reporter à Bales, CE. and Durfee, GR. Cytologic Techniques in Koss, L, ed. Diagnostic Cytology and its
Histopathologic Basis. 3rd Edition. Philadelphia: JB Lippincott. Vol. II: p. 1187-1260 pour des détails
10.2 Manuel de l'opérateur du processeur ThinPrep™ 5000
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