Leica Novocastra CD20 Mode D'emploi page 22

Kvalitetskontroll
Skillnader i vävnadsbehandling och tekniska metoder i användarens laboratorium kan ge stor variation i resultaten vilket kan
göra det nödvändigt att genomföra regelbundna interna kontroller utöver följande metoder.
Kontroller bör vara färska obduktions-/biopsi-/kirurgiprover som snarast möjligt formalinfixeras, bearbetas och paraffininbäddas på
samma sätt som patientprover.
Positiv Vävnadskontroll
Används för att ange korrekt förberedda vävnader och rätt färgningstekniker.
En positiv vävnadskontroll bör ingå i varje uppsättning av testförhållanden vid varje färgningskörning.
En vävnad med svag positiv färgning är mer lämplig för optimal kvalitetskontroll och för att upptäcka låga nivåer av reagensdegradering
än en vävnad med stark positiv färgning.
2
Tonsiller utgör rekommenderad positiv kontrollvävnad.
Om den positiva vävnadskontrollen inte uppvisar positiv färgning bör resultat med testproverna anses vara ogiltiga.
Negativ Vävnadskontroll
Bör undersökas efter den positiva vävnadskontrollen för att fastställa specificiteten för märkningen av målantigenet med den primära
antikroppen.
Lillhjärnan utgör rekommenderad negativ kontrollvävnad.
Alternativt ger ofta en mängd olika celltyper som finns i de flesta vävnadssnitt negativa kontrollområden men detta bör kontrolleras av
användaren.
Ospecifik färgning, om det förekommer, har ofta ett diffust utseende. Sporadisk färgning av bindväv kan också observeras i snitt från
överflödigt formalinfixerade vävnader. Använd intakta celler för tolkning av färgningsresultat. Nekrotiska eller degenererade celler färgar
ofta ospecifikt. Falskt positiva resultat kan uppstå p.g.a. icke-immunologisk bindning av proteiner eller substratreaktionsprodukter. De
3
kan också orsakas av endogena enzymer som pseudoperoxidas (erytrocyter), endogent peroxidas (cytokrom C) eller endogent biotin
(t.ex. lever, bröst, hjärna, njure) beroende på typ av immunfärgning som används. För att skilja endogen enzymaktivitet eller ospecifik
enzymbindning från specifik immunreaktivitet kan ytterligare patientvävnader färgas exklusivt med respektive substratkromogen
eller enzymkomplex (avidin-biotin, streptavidin, märkt polymer) och substrat-kromogen. Om specifik färgning sker i den negativa
vävnadskontrollen bör resultat med patientprover anses vara ogiltiga.
Negativ Reagenskontroll
Använd en ospecifik negativ reagenskontroll istället för den primära antikroppen med ett snitt från varje patientprov för att utvärdera
ospecifik färgning och tillåta bättre tolkning av specifik färgning på antigenområdet.
Patientvävnad
Undersök patientprover färgade med NCL-L-CD20-L26 sist. Positiv färgningsintensitet bör utvärderas inom ramen för all ospecifik
bakgrundsfärgning av den negativa reagenskontrollen. Som vid alla immunhistokemiska tester betyder ett negativt resultat att antigenet
inte upptäcktes och inte att det inte förekom i de analyserade cellerna/vävnaderna. Använd vid behov en antikroppspanel för att
identifiera falskt negativa reaktioner.
Förväntade Resultat
Normal vävnad
Klonen L26 identifierar CD20-antigen på cellytan av celler i B-cellslinjen, med undantag av plasmaceller. (Totalt antal normala fall som
utvärderats = 96).
Onormal vävnad
Klonen L26 färgade 105/106 diffusa, stora B-cellslymfom, 11/11 follikulära lymfom, 10/11 kroniska lymfocytiska lymfom, 2/11 Hodgkins
lymfom, 7/7 mantelcellslymfom, 1/1 akut lymfoblastiskt B-cellslymfom och 1/1 lymfom i gränszonen. Med undantag för reaktiva B-celler
sågs ingen färgning i anaplastiska stora T-cellslymfom (0/7), angioimmunoblastiska T-cellslymfom (0/4), T-/ NK-cellslymfom (0/3), ett
perifert T-cellslymfom (0/1), ett T-cellslymfom (0/1), ett primitivt akut lymfoblastisk B-/T-cellslymfom (0/1), hjärntumörer (0/2), tumörer i
matstrupe (0/2 ), tumörer i struphuvudet (0/1), tumörer i tymus (0/1), tumörer i sköldkörtel (0/4), brösttumörer (0/2), magtumörer (0/2),
mjukvävnadstumörer (0/2), tungtumörer (0/2), lungtumörer (0/4), metastatiska tumörer av okänt ursprung (0/2), levertumörer (0/4),
njurtumörer (0/2), äggstockstumörer (0/4), livmoderhalstumörer (0/2), testikeltumörer (0/2), tjocktarmstumörer (0/2), ändtarmstumörer
(0/2) eller hudtumörer (0/2 ). (Totalt antal tumörfall som utvärderats = 209).
NCL-L-CD20-L26 rekommenderas för användning som en del av en antikroppspanel för att underlätta karakteriseringen av
B-cellsavvikelser.
Allmänna Begränsningar
Immunhistokemi är en diagnostisk process i flera steg som kräver specialiserad utbildning i urvalet av lämpliga reagens, val av vävnad,
fixering och bearbetning, förberedelse av IHC-objektglaset samt tolkning av färgningsresultaten.
Vävnadsfärgning påverkas av hantering och bearbetning av vävnaden före färgningen. Felaktig fixering, nedfrysning, upptining,
tvättning, torkning, uppvärmning, snittning eller kontaminering av andra vävnader eller vätskor kan framställa artefakter, infångande av
antikroppar eller falskt negativa resultat. Motsägelsefulla resultat kan bero på variationer av fixerings- och inbäddningsmetoder eller på
naturliga oregelbundenheter i vävnaden.
4
Överflödig eller ofullständig kontrastfägning kan försvåra en korrekt tolkning av resultatet.
Den kliniska tolkningen av all färgning eller dess frånvaro bör kompletteras med morfologiska undersökningar som använder korrekta
kontroller och utvärderas av kvalificerad patolog inom ramen för patientens kliniska anamnes och andra diagnostiska tester.
Antikroppar från Leica Biosystems Newcastle Ltd är till för användning så som anges på antingen frysta eller paraffininbäddade snitt
med specifika fixeringskrav. Oväntat antigenuttryck kan ske, speciellt i neoplasmer. Morfologisk analys och utvärdering av lämpliga
kontroller måste ingå i den kliniska tolkningen av alla färgade vävnadssnitt.
CD20-L26-L-CE
Page 21