Leica BIOSYSTEMS BOND Hybridization Solution AR9037 Mode D'emploi page 36

• Próbki przed i po utrwaleniu oraz wszelkie materiały narażone na kontakt z nimi należy traktować jak materiały potencjalnie
zakaźne i należy je utylizować z zachowaniem odpowiednich środków ostrożności.
odczynników ustami i należy unikać kontaktu odczynników i preparatów ze skórą oraz błonami śluzowymi. W razie kontaktu
odczynników lub próbek ze szczególnie narażonymi miejscami przemyć miejsce kontaktu dużą ilością wody. Należy zasięgnąć
porady lekarza.
• Wszelkie potencjalnie toksyczne składniki należy utylizować zgodnie z krajowymi lub lokalnymi przepisami.
• Chronić odczynniki przed skażeniem drobnoustrojami, ponieważ może ono doprowadzić do zwiększonego barwienia
niespecyficznego.
• Zastosowanie czasów odzyskiwania, inkubacji lub temperatur innych niż podano w instrukcji może spowodować błędne wyniki.
Wszelkie zmiany tego typu muszą zostać zweryfikowane przez użytkownika.
Instrukcja stosowania
Rozcieńczyć koncentrat sondy ISH do stężenia określonego przez użytkownika za pomocą BOND Hybridization Solution. Przenieść
rozcieńczoną sondę do BOND Open Container i zarejestrować jako sondę ISH w systemie BOND (w tym w systemach BOND-MAX
i BOND-III).
Rozcieńczenia sondy należy badać przy użyciu odpowiedniej tkanki z kontroli pozytywnej dla danej sondy ISH (zob. „Kontrola jakości"
w rozdziale „Korzystanie z odczynników BOND" w dokumentacji użytkownika).
Przygotowując rozcieńczenia do miareczkowania, należy upewnić się, że uwzględniona została objętość martwa odpowiedniego
pojemnika BOND Open Container (wartości można znaleźć w dokumentacji użytkownika BOND).
Szczególne ograniczenia dla produktu
BOND Hybridization Solution został opracowany z myślą o zastosowaniu w systemie BOND (w tym systemach BOND-MAX i BOND-III).
Zalecany protokół obróbki wstępnej i barwienia zależy od wybranej sondy (i metody detekcji). Dalsze informacje znajdują się w instrukcji
zastosowania.
W tych okolicznościach użytkownicy, którzy postępują niezgodnie z zalecanymi procedurami testowymi muszą wziąć odpowiedzialność
za interpretację wyników chorego. Czasy protokołów mogą się różnić ze względu na różnice w typie tkanki, utrwalaniu i przetwarzaniu.
Ponadto stężenie preparatu BOND Enzyme i czas inkubacji mogą wymagać optymalizacji w zależności od rodzaju tkanki, warunków
przetwarzania i utrwalania.
Podczas optymalizacji obróbki wstępnej i czasów protokołów dla CISH należy stosować negatywną kontrolę odczynników.
Odpowiednie stężenie własnej sondy ISH użytkownika może się różnić ze względu na zmienność w utrwalaniu tkanek i skuteczność
trawienia enzymatycznego i musi być określone empirycznie.
Rozwiązywanie problemów
Odnośnik 3 może być pomocny w podejmowaniu działań zaradczych.
Próbki testowe należy uzupełnić odpowiednimi kontrolami tkanek i odczynników.
W celu zgłoszenia nietypowego barwienia należy skontaktować się z lokalnym dystrybutorem lub z regionalnym biurem firmy Leica
Biosystems.
Dodatkowe informacje
Dodatkowe informacje dotyczące ISH (hybrydyzacji in situ) przy użyciu odczynników BOND opisanego w rozdziałach „Zasady
postępowania", „Wymagane materiały", „Przygotowanie próbek", „Kontrola jakości", „Weryfikacja testu", „Interpretacja barwienia",
„Objaśnienie symboli na etykietach" i „Ograniczenia ogólne" można znaleźć w rozdziale „Stosowanie odczynników BOND"
w dokumentacji użytkownika systemu BOND.
Bibliografia
1. Clinical Laboratory Improvement Amendments of 1988, Final Rule 57 FR 7163 February 28, 1992.
2. Villanova PA. National Committee for Clinical Laboratory Standards (NCCLS). Protection of laboratory workers from infectious
diseases transmitted by blood and tissue; proposed guideline. 1991; 7(9). Order code M29-P.
3. Wilkinson DG. The theory and practice of in situ hybridization. In: Wilkinson DG. (ed.) In Situ Hybridization. A practical approach.
2nd Edition. New York: Oxford University Press, 1998, pp.18–20.
Data publikacji
03 października 2018
AR9037
Page 35
Podczas pobierania pipetą nie wolno zasysać
2