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Le test et les méthodes décrits ci-dessus conviennent exclusivement à des cultures pures de
bactéries.
La méthode décrite ici pour la préparation et l'ensemencement de l'inoculum est celle figurant
dans la norme du NCCLS.
procédure Bauer-Kirby pour les tests de sensibilité antimicrobienne. Les densités d'inoculum et
la méthode d'ensemencement qu'elles stipulent peuvent s'éloigner de celles prescrites dans la
norme du NCCLS. Aucune norme européenne commune n'étant définie à ce jour pour les tests
de sensibilité, il convient d'appliquer les normes nationales si les instructions du NCCLS ne
sont pas applicables.
Les diamètres des zones mises en évidence dans ce milieu lors du test de sensibilité ne sont
pas nécessairement identiques à ceux obtenus sur la Mueller Hinton II Agar dans la norme M2-
7,8
A6 du NCCLS.
Par conséquent, il est recommandé de comparer les diamètres des zones
obtenues sur les deux milieux en utilisant les disques antimicrobiens testés habituellement avant
de généraliser l'emploi de la BD Iso-Res Agar.
Toute concentration incorrecte de l'inoculum peut entraîner des résultats erronés. Les zones
d'inhibition peuvent être trop petites si l'inoculum est trop concentré et trop grandes et difficiles
à mesurer si l'inoculum est trop dilué.
La conservation dans de mauvaises conditions des disques imprégnés d'agents antimicrobiens
risque d'entraîner une baisse des performances et un résultat faussement résistant.
Il est possible de rencontrer des bactéries nécessitant la présence de thymine ou de thymidine.
Ces organismes peuvent ne pas se développer correctement dans ce milieu car il ne contient
de la thymine ou de la thymidine qu'en faible quantité.
La sensibilité in vitro d'un organisme à un agent antimicrobien donné ne signifie pas
obligatoirement que ce dernier sera également efficace in vivo.
REFERENCES
1. Ericsson, H.M, and J.C. Sherris 1971. Acta Pathol. Microbiol. Scand. Suppl. 217: 1-90.
2. Garrod, L.P., and P.M. Waterworth. 1971. J. Clin. Pathol. 24: 779-789.
3. Reller, L.B., et al. 1974. J. Infect. Dis. 130: 454-463.
4. Reynolds, A.V., et al. 1974. Brit. Med. J. II: 778.
5. Stewart, S.M., et al. 1975. J. Clin. Pathol. 28: 195-197.
6. Bell, S.M. 1975. Pathology 7, Suppl.: 1-48.
7. National Committee for Clinical Laboratory Standards. 2000. Approved standard: M2-A7.
Performance standards for antimicrobial disk susceptibility tests, 7
for Clinical Laboratory Standards, Wayne, Pa.
8. Jorgensen, J.H., and J.D. Turnidge. 2003. Susceptibility test methods: dilution and disk
diffusion methods. In: Murray, P. R., E. J. Baron, J.H. Jorgensen, M. A. Pfaller, and R. H.
Yolken (ed.). Manual of clinical microbiology, 8th ed. American Society for Microbiology,
Washington, D.C. USA.
9. Werkgroep Richtlijnen Gevoeligheidsbepalingen. 1981. Standaardisatie van
Gevoeligheidsbepalingen. Bilthoven, The Netherlands.
CONDITIONNEMENT
BD Iso-Res Agar
o
N
réf. 254021
o
N
réf. 254076
INFORMATIONS COMPLEMENTAIRES
Pour plus d'informations, contacter le représentant local de BD.
PA-254021.07
7
D'autres normes nationales ont été développées d'après la
Milieux en boîtes de Pétri prêts à l'emploi, 20 unités
Milieux en boîtes de Pétri prêts à l'emploi, 120 unités
- 4 -
th
ed. National Committee
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